• Поиск:

издатель: ЮпокомИнфоМед

Шихаммедова А.Д., Султанова Н.Г.

Особенности микробиоты кишечника у детей с острой крапивницей

Азербайджанский медицинский университет, Баку

Внимание! Статья адресована врачам-специалистам

 

Shikhamedova A.J., Sultanova N.H.

Azerbaijan Medical University, Baku

Caracteristics of intestinal microbiota in children, sufferin from acute urticaruia

Резюме. Микробиота желудочно-кишечного тракта представляет собой сложнейшую микробную экосистему и занимает лидирующее положение среди микробиоты различных биотопов человека. Целью исследования стала оценка состояния микробиоты кишечника у детей с острой крапивницей методом полимеразной цепной реакции с детекцией результатов в режиме реального времени (ПЦР-РВ). В исследовании приняли участие 80 детей обоего пола, находящихся под наблюдением с диагнозом «Острая крапивница» (основная группа). Контрольную группу составили 20 практически здоровых детей. Проведено исследование микробиоты кишечника методом ПЦР с автоматической регистрацией результатов в режиме реального времени. Межгрупповые показатели сравнивали применением критерия ?2 Пирсона с дополнительным уточнением результатов критерием U Уилкоксона. Внутригрупповые сравнения проводили критериями W Вилкоксона и Z-знаков. Вычисление проводили в статистическом пакете SPSS-26. Выявленные изменения в микробиоте кишечника предполагают назначение таким больным пробиотических препаратов для коррекции нарушений кишечной микрофлоры.

Ключевые слова: острая крапивница, дети, микробиота кишечника, пробиотики.

Медицинскиеновости. – 2022. – №9. – С. 49–51.

Summary. The microbiota of the gastrointestinal tract is the most complex microbial ecosystem and occupies a leading position among the microbiota of various human biotopes. To assess the state of the intestinal microbiota in children with acute urticaria using a polymerase chain reaction with real-time detection of results (RT-PCR). The study involved 80 children of both sexes under observation with a diagnosis of «Acute urticaria» (main group). The control group consisted of 20 practically healthy children. A study of the intestinal microbiota was carried out by PCR with automatic registration of results in real time. Intergroup indicators were compared using the ?2 Pearson test, with additional refinement of the results by the U Wilcoxon test. Intragroup comparisons were performed using W Wilcoxon test and Z-signs. The calculation was carried out in the statistical package SPSS-26. The revealed changes in the intestinal microbiota suggest the appointment of probiotic preparations for such patients to correct violations of the intestinal microflora.

Keywords: acute urticaria, children, intestinal microbiota, probiotics.

Meditsinskie novosti. – 2022. – N9. – P. 49–51.

Микробиота желудочно-кишечного тракта представляет собой сложнейшую микробную экосистему и занимает лидирующее положение среди микробиоты различных биотопов человека. Формирование микробиоты начинается с момента рождения и зависит от множества факторов, таких как срок и способ рождения, способ вскармливания ребенка и т.д. [1]. Микробиота толстого кишечника является самой многочисленной и представлена 17 семействами, 45 родами и более чем 1000 видов бактерий [2, 3]. Развитие молекулярно-генетических технологий, которые позволяют идентифицировать многочисленные виды бактерий, не поддающихся культивированию, послужили пусковым фактором к углубленному изучению микробиоты человека. 

Происходящее во всем мире снижение биоразнообразия, изменения в социальном поведении приводят к нарушению микробной экологии человека. Изменения микробиоты кишечника однозначно влияют на здоровье человека. В литературе широко обсуждаются вопросы влияния микрофлоры кишечника на течение и развитие самых различных заболеваний. Возможными клиническими последствиями дисбиоза кишечника являются различная патология желудочно-кишечного тракта, кожные заболевания, утяжеление течения иммунозависимой патологии [4, 5].

Кишечная микробиота, помимо участия в пищеварении, выполняет иммуномодулирующую функцию, а также задействована в развитии и функционировании различных систем органов. Учитывая влияние кишечной микробиоты на иммунные функции, в настоящее время активно обсуждается ее роль в патогенезе аллергической патологии [6–8].

Цель исследования – оценка микробиоты кишечника у детей с острой крапивницей методом полимеразной цепной реакции с детекцией результатов в режиме реального времени (ПЦР-РВ).

Материалы и методы

В исследовании приняли участие 80 детей обоего пола, находящиеся под наблюдением с диагнозом «Острая крапивница» (основная группа). Контрольную группу составили 20 практически здоровых детей. Средний возраст обследуемых – 7,5±0,4 года. Диагноз был выставлен на основании анамнестических данных и клинических симптомов заболевания в соответствии с Международной статистической классификацией болезней 10-го пересмотра (МКБ-10). Общеклинические методы исследования включали анализ анамнестических данных, объективный осмотр ребенка с определением степени тяжести заболевания по T. Zuberbier [9].

Основными критериями включения пациентов в исследование явились возраст детей от 0 до 16 лет, наличие эпизода крапивницы длительностью менее 6 недель, информированные согласия от родителей. Критериями исключения были следующие: возраст пациентов старше 16 лет, отсутствие подтвержденного диагноза «Острая крапивница», отсутствие согласия родителей на обследование и лечение детей.

При изучении микробиоты толстого кишечника больных острой крапивницей частоту обнаружения выделенных микроорганизмов сравнивали с аналогичными показателями детей контрольной группы. Всем детям выполнено исследование образцов фекалий с целью определения просветной микробиоты толстой кишки методом ПЦР-РВ. Состав микробиоты кишечника пациентов определяли в образцах фекалий, которые собирались в одноразовые пластиковые стерильные контейнеры. Биологический материал помещали в пробирку типа «Эппендорф» объемом 1,5 мл, содержащую транспортную среду для ПЦР-исследований, и маркировали. ПЦР-диагностика исследуемых образцов проводилась с использованием детектирующего амплификатора FX-96, обеспечивающего проведение ПЦР с автоматической регистрацией результатов в режиме реального времени. Все этапы ПЦР-исследования выполнены согласно инструкции производителя тестов (QIAGEN, Германия).

В течение 2 месяцев до сбора образцов дети не принимали антибиотики, пробиотики или пребиотики, поскольку все эти факторы могут оказывать влияние на микробиоту кишечника.

Межгрупповые показатели сравнивали применением критерия ?2 Пирсона (Pearson Chi-Square – р?2) с дополнительным уточнением результатов критерием U Уилкоксона (U – Mann – Whitney – pU). Внутригрупповые сравнения проводили критериями W Вилкоксона (Wilcoxon test – pW) и Z-знаков (Sign test – pz). Вычисление выполняли в статистическом пакете SPSS-26.

Результаты и обсуждение

Для оценки состояния дисбиоза толстой кишки 80 детям с острой крапивницей и 20 здоровым детям из группы контроля проводилось исследование микробиоты кишечника. Методом ПЦР-РВ в полученных материалах выделены микроорганизмы, относящиеся к домену Bacteria, четырем основным типам (Firmicutes, Bacteroidetes, Actinobacteria и Proteobacteria). Состав кишечной микробиоты в исследуемых группах представлен в таблице.

У детей с острой крапивницей главными бактериями фекального микробного сообщества были Bifidobacterium spp. – у 78 (97,5%) больных. Далее по численности встречались B. Fragilis – у 77 (96,3%), E. coli – у 71 (88,8%) больного. Наименьшее представительство имели C. difficile – у 6 (7,5%) детей. Снижение количества Lactobacillus spp., оцениваемое до 1+, отмечали у 38,8%, до 2+ – у 61,3% детей. Снижение общего количества бактерий до 1+ наблюдали у 46,3%, до 2+ – у 53,8% больных острой крапивницей. Отрицательный результат теста показали Bifidobacterium spp. – у 2 (2,5%), E. coli – у 9 (11,3%), B. fragilis – у 3 (3,8%), C. difficile – у 74 (92,5%) больных.

В контрольной группе микробный состав фекальных образцов был следующим: Bifidobacterium spp. встречались в 40,0% (n=8), E. coli – в 65,0% (n=13), B. fragilis – в 50,0% (n=10) наблюдений. В этой группе C. difficile не определялись. Снижение количества Lactobacillus spp. до 1+ отмечалось у 35,0%, до 2+ – у 65,0% здоровых детей. Снижение общего количества бактерий до 1+ наблюдалась в 30,0%, до 2+ – в 70,0% случаев (см. таблицу).

 

Таблица. Показатели кишечного микробиоценоза у обследованных детей

Группа бактерий

Группы наблюдения

p?2

pU

контрольная (n=20)

основная (n=80)

абс.

%

абс.

%

Bifidobacterium spp.

отрицат.

12

60,0%

2

2,5%

<0,001

<0,001

положит.

8

40,0%

78

97,5%

E. coli

отрицат.

7

35,0%

9

11,3%

0,010

0,010

положит.

13

65,0%

71

88,8%

B. fragilis

отрицат.

10

50,0%

3

3,8%

<0,001

<0,001

положит.

10

50,0%

77

96,3%

C. difficile

отрицат.

20

100,0%

74

92,5%

0,207

0,209

положит.

0

0,0%

6

7,5%

Lactobacillus spp.

+

7

35,0%

31

38,8%

0,757

0,759

++

13

65,0%

49

61,3%

Общее количество бактерий

+

6

30,0%

37

46,3%

0,189

0,191

++

14

70,0%

43

53,8%

 

При сравнении частот встречаемости различных таксонов микроорганизмов в толстом кишечнике детей основной и контрольной групп выявлены достоверные отличия по трем микроорганизмам. Наиболее часто встречающийся тип бактерий в группе больных острой крапивницей представлен типом Actinobacteria, который объединяет грамположительные бактерии. У больных острой крапивницей по сравнению с группой контроля отмечено увеличение бактерий рода Bifidobacterium U<0,001).

Следующий по распространенности тип бактерий микрофлоры кишечника представлен Bacteroidetes, который включает в себя грамотрицательные неспорообразующие строгие анаэробы, обладающие сахаролитической активностью. У детей с острой крапивницей по сравнению с контрольной группой выявлено увеличение доли бактерий рода Bacteroides (B. fragilis) (рU<0,001).

В группе больных также отмечено статистически значимое увеличение в составе кишечной микробиоты доли бактерий, относящихся к типу Proteobacteria. Тип Proteobacteria объединяет большинство грамотрицательных микроорганизмов, относящихся к факультативным или облигатным анаэробам. У детей с острой крапивницей рост Proteobacteria происходит за счет рода Escherichia (E. сoli) (рU=0,010). Для C. difficileU=0,209) и Lactobacillus spp. U=0,759) статистически достоверных различий не отмечалось.

У обследованных детей с острой крапивницей отмечается тенденция к снижению Lactobacillus spp. и повышению Bifidobacterium spp., в связи с чем этим пациентам могут быть рекомендованы пробиотики. В настоящее время для лечения дисбиоза кишечника применяется значительное количество пробиотических препаратов как моно-, так и поликомпонентных [10]. Как правило, для создания подобных препаратов используются различные штаммы бифидо- и лактобактерий. Одним из симбиотических препаратов, нормализующих кишечную микрофлору, является Пробиоксин Кидс (Novator Pharma, Великобритания).

Пробиотик был назначен 21 ребенку с изменениями кишечного микробиоценоза. Контрольный анализ после проведенной коррекции дисбиоза кишечника показал, что в микробном пейзаже пациентов отмечалось достоверное увеличение числа Lactobacillus spp. – у 11 (52,3%) (рz=0,001) детей, снижение E. coli – у 20 (95,2%) (рW<0,001), B. fragilis – у 14 (66,7%) (рW<0,001) больных. Статистически значимые изменения в общем количество бактерий (рz=1,000) также в количествах Bifidobacterium spp. W=0,317) и CdifficileW=0,317) не обнаружены.

Заключение

Таким образом, у пациентов с острой крапивницей в различной степени были выявлены изменения кишечного микробиоценоза. Установлены статистически значимые различия частот встречаемости микроорганизмов, верифицированных в толстом кишечнике детей основной и контрольной групп наблюдения. Выявленные изменения в микробиоте кишечника предполагают назначение таким больным пробиотических препаратов для коррекции нарушений кишечной микрофлоры.

 

Л И Т Е Р А Т у Р А

 

1. Юдина Ю.В., Корсунский А.А., Аминова А.И., Абдуллаева Г.Д., Продеус А.П. // Доказательная гастроэнтерология. – 2019. – Т.8, №4–5. – С.36–43.

2. Максимова О.В., Гервазиева В.Б., Зверев В.В. // Журнал микробиологии. – 2014. – №3. – С.49–60.

3. Elson C.O., Alexander K.L. // Dig Dis. – 2015. – Vol.33, N2. – P.131–136.

4. Кайбышева В.О., Жарова М.Е., Филимендикова К.Ю., Никонов Е.Л. // Доктор.Ру. – 2021. – Т.20, №4. – С.40–45.

5. Айтбаев К.А., Муркамилов И.Т., Фомин В.В., Кудайбергенова И.О., Юсупов Ф.А. // The Scientific Heritage. – 2021. – Vol.65. – P.41–47.

6. Аминова А.И., Гумбатова З.Ф., Ерюшова Т.Ю. // Смоленский мед. альманах. – 2020. – №2. – С.176–179.

7. Azad M.B., Konya T., Maughan H. // Allergy Asthma ClinImmunol. – 2013. – Vol.9, N1. – P.15.

8. Legatzki A., Rosler B., von Mutius E. // Curr. Allergy Asthma Rep. – 2014. – Vol.14, N10. – P.466.

9.Zuberbier T., Aberer W., Asero R., et al. // Allergy. – 2018. – Vol.73, N7. – P.1393–1414.

10. Силина Л.В., Чаплыгин А.В., Устинов М.В., Ласеев Д.И., Илюхина Е.В. // Клин. дерматология и венерология. – 2019. – Т.18, №6. – С.776–783.

 

Медицинские новости. – 2022. – №9. – С. 49-51.

Внимание! Статья адресована врачам-специалистам. Перепечатка данной статьи или её фрагментов в Интернете без гиперссылки на первоисточник рассматривается как нарушение авторских прав.

Содержание » Архив »

Разработка сайта: Softconveyer